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AxyPrep 基因組DNA小量試劑盒
本試劑盒采用獨特的裂解和相分離技術，結合DNA 制備膜選擇性地吸附DNA 的方法達到純化基因組 DNA 的目的。每次制備可獲得多至20 μg 的基因組DNA。用于PCR、Southern 印跡分析、RAPD、RFLD 等分子生物學實驗。
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本試劑盒采用獨特的裂解和相分離技術，結合DNA 制備膜選擇性地吸附DNA 的方法達到純化基因組 DNA 的目的。每次制備可獲得多至20 μg 的基因組DNA。用于PCR、Southern 印跡分析、RAPD、RFLD 等分子生物學實驗。
一、試劑盒組成、貯存、穩定性
RNase A：50 mg/ml，室溫保存。
Buffer G-A：裂解液，室溫密閉貯存。
Buffer G-B：蛋白去除液，室溫密閉貯存。
Buffer DV-A：Buffer DV 的制備液，請參照實驗準備Buffer DV 的配制方法配制，室溫密閉貯存。
Buffer DV：相分離液，室溫密閉貯存。
Buffer BV：DNA 結合液，室溫密閉貯存。
Buffer W1：洗滌液，室溫密閉貯存。
Buffer W2 concentrate：去鹽液。使用前，按試劑瓶上指定的體積加入無水乙醇，混合均勻，室溫密
閉貯存。可用100%乙醇或95%乙醇。
Eluent：2.5 mM Tris-HCl，pH 8.5，室溫密閉貯存。
二、注意事項
Buffer G-A、Buffer G-B、Buffer BV 和Buffer W1 含刺激性化合物，操作時要戴乳膠手套和眼鏡，
避免沾染皮膚、眼睛和衣服，謹防吸入口鼻。若沾染皮膚、眼睛時，要立即用大量水沖洗，必要時尋
求醫療咨詢。
三、實驗準備
1. 第一次使用時，在Buffer W2 concentrate 中按試劑瓶上指定的體積加入無水乙醇并混合均勻。
2. 制備Buffer DV：取2 ml Buffer DV-A，125 ml 異丙醇，75 ml 異丁醇，加入提供的250 ml 試劑瓶
中，混合均勻。
3. 4℃預冷Buffer DV。
4. 準備65℃水浴。
5. 使用前檢查Buffer G-A 和Buffer G-B 是否有沉淀析出，若出現沉淀，請于65℃水浴加熱至沉淀完
全溶解后再使用。
6. 將Eluent 或去離子水加熱至65℃有利于基因組DNA 的充分洗脫。
四、操作步驟
從樣品中提取基因組DNA
不同的樣品采用不同的勻漿步驟。
【從動物組織中提取基因組DNA】
步驟1-3 請根據不同的實驗條件選擇對應的操作
使用研缽進行勻漿
1. 取1-20 mg 動物或人組織，移入冰水浴預冷的研缽中，快速、用力研磨成勻漿。
* 列組織請加液氮研磨至粉末狀后，將研缽置于65℃水浴，當粉末開始融化時繼續研磨1 min，勻漿后加入650 μl
Buffer G-A 和0.9 μl RNase A，再進入步驟3 的操作下。
A. 富含DNA 酶的胰臟，脾臟，胸腺，淋巴等組織。
B. 富含膠原蛋白的皮膚、肌健等組織。
C. 富含角質蛋白的組織或堅硬的組織如骨骼等。
2. 加入650 μl Buffer G-A 和0.9 μl RNase A 后溫和地研磨30 s。
3. 收集650 μl 研磨好的組織勻漿并轉入2 ml 離心管。如勻漿體積不足650 μl，補充Buffer G-A 至650 μl，65℃水浴5 min。
【從植物組織中提取基因組DNA】
1.按下表稱取適量的新鮮植物組織（如選用的是冷凍干燥的組織，則組織用量減半）。剪成小塊放入研缽中；如從培養的植物細胞中提取基因組DNA，收集2×103-1×107 培養的植物細胞，10,000×g 離心1 min，加入150 μl 水充分懸浮細胞并轉入研缽中，加入液氮，使組織冷凍完全后，快速、用力研磨至粉末狀。研磨時應間斷加入液氮以防止組織融化，研磨充分后將研缽放入65℃水浴至樣品粉末剛開始融化。
* 表1 新鮮植物樣品使用量按下表收集
植物花或葉片 10-100 mg
植物莖 ≤240 mg
植物根 ≤240 mg
植物種子 ≤240 mg
* 如新鮮植物葉超過120 mg 或干植物葉超過60 mg，加入1300 μl Buffer G-A，勻漿后將樣品分到兩個2 ml 離心管中，然后按照步驟1-7 平行操作兩管，第8 步和接下來的步驟合并到一管操作，以提高洗脫的DNA 的濃度。
* 樣品研磨應充分，否則嚴重影響基因組DNA 的得率。
2. 加入700 μl Buffer G-A 和1.2 μl RNase A 貯存液，用力碾磨30 s。
3. 轉移650 μl 研磨好的勻漿至2 ml離心管中，如勻漿體積不足650 μl,補充Buffer G-A 至650 μl，65℃水浴15 min。
* 富含纖維的根/莖等組織或富含淀粉、蛋白質的種子等樣品，可延長水浴時間至60 min。
【從培養細胞中提取基因組DNA】
步驟1-2 應根據培養細胞的類型來操作，若從植物細胞中提取基因組DNA，請按步驟(從植物組織中提取基因組DNA)來勻漿
A. 懸浮培養的動物細胞或新鮮分離的動物組織單細胞懸液
1A. 用2 ml 離心管收集1×103-2×106 細胞懸浮液，2,000×g 離心5 min，棄盡上清。
2A. 加入150 μl 去離子水或PBS 懸浮細胞，加入500 μl Buffer G-A。
1B. 盡可能的丟掉上清液，加650 μl Buffer G-A 到每孔中，室溫靜置1 min。
2B. 用吸頭來回吸注幾次，轉移650 μl 勻漿至2 ml 離心管，如勻漿體積不足650 μl，補足Buffer G-A 至650 μl。加入0.8 μl RNase A,旋渦振蕩15 s，室溫靜置1 min。
【從酵母中提取基因組DNA】
1. 收集2×106-5×107 酵母細胞，10,000×g 離心 1min。用150 μl 水懸浮酵母細胞并轉移至研缽中，加入液氮，待樣品被完全冷凍后，快速、用力研磨至粉末狀。將研缽放入65℃水浴至樣品粉末剛開始融化時進入下一步操作。
* 當OD680 為1 時，酵母濃度為3×107 細胞/ml。
* 酵母細胞壁較為堅韌，應適當延長研磨時間和研磨次數以確保充分破碎酵母細胞壁。
* 研磨時應及時加入液氮，防止樣品在研磨時融化。
2. 加入600 μl Buffer G-A 和1.2 μl RNase A 貯存液，快速用力碾磨30 s。
3. 轉移650 μl 研磨好的勻漿至2 ml 離心管中，如勻漿體積不足650 μl，補充Buffer G-A 至650 μl，65℃水浴10 min。
【兩相分離去除蛋白和其它雜質】
4. 加入400 μl Buffer G-B 和1 ml Buffer DV（4℃預冷），用力混合均勻。12,000×g 離心2 min。
* 請在實驗前按照實驗準備步驟2 準備Buffer DV.
5. 盡可能丟棄上相，保留相間沉淀和下相。加入1 ml 4℃預冷Buffer DV，用力混合，12,000×g 離心2 min。
【基因組DNA 的純化】
6. 丟棄上相，將下相轉移至濾器（濾器置于2 ml 離心管中），12,000×g 離心1 min。
* 上相無需完全棄盡，在轉移無色下相時偶有混入的上相，可在Tip 頭內迅速分相，便于丟棄。
* 如在轉移過程中吸入少量界面沉淀，不必去除，可過濾除去。
* 有色上相務必除盡，否則將抑制DNA 結合到silica 膜上。
7. 棄濾器，在濾液中加入400 μl Buffer BV，混合均勻。
步驟8-11，可選擇離心法或負壓法
A．負壓法
8A. 將DNA 制備管插到負壓裝置的插口上，將步驟7 的混合液移到制備管中，開啟并調節負壓裝置至-20-30 英寸汞柱。
9A. 保持負壓，加入500 μl Buffer W1,吸盡管中液體。
10A. 保持負壓，加入700 μl 已加入乙醇的Buffer W2，吸盡管中液體；已同樣的方法再用700 μlBuffer W2 洗滌一次。
* 確認在Buffer W2 concentrate 中已按試劑瓶上的指定體積加入無水乙醇。
* 沿管壁加入Buffer W2 有助于徹底沖洗附在管壁上的鹽分。
* 兩次用Buffer W2 沖洗能確保鹽分被完全消除，消除對酶切反應的影響。
11A. 將DNA 制備管放回2 ml 離心管中，12,000×g 離心1 min。
B．離心法
8B. 將DNA 制備管置于2 ml 離心管中，將步驟7 中的混合液移至制備管中，12,000×g 離心1 min。
9B. 棄濾液，將制備管置回到原來的2 ml 離心管中，加入500 μl Buffer W1，12,000×g離心1 min。
10B. 棄濾液，將制備管置回到原來的2 ml 離心管中，加入700 μl Buffer W2，12,000×g 離心1 min，以同樣的方法，用700 μl Buffer W2 再洗滌一次。
* 確認Buffer W2 concentrate 中已按試劑瓶上指定的體積加入無水乙醇。
* 再次用Buffer W2 沖洗能確保鹽份被完全清除，消除對酶切反應的影響。
11B. 棄濾液，將制備管置回原來的2 ml 離心管中，12,000×g 離心1 min。
12. 將DNA 制備管置于另一潔凈的1.5 ml 離心管中，在silica 膜中央加100-200 μl Eluent 或去離子水，室溫靜置1 min，12,000×g 離心1min 洗脫DNA。
* 將去離子水或Eluent 加熱至65℃將提高洗脫效率。